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实验分析数据为什么容易出错

更新时间:2013-07-03   点击次数:2235次

 今日,据售后客户的反馈报告显示,很多客户实验做出的分析有问题,这种现象曾在美国Scripps Research Institute的研究员Geoffrey Chang发现过,他用来分析实验数据的程序发生错误,因此只能发表声明撤回五篇已发表的论文,包含三篇发表在Science上的论文。

 事情发生在2006年九月,一名瑞士的研究员在Nature上质疑Geoffrey Chang在2001年发表于Science上的一个蛋白质结构有问题。结果仔细检查后竟然发现,他的团队所写的用来分析实验数据的程序将两行数据的符号颠倒了,结果将他团队用来决定蛋白质结构的电子密度颠倒了过来。因此就这么得到了错误的结果。不过错误的结果导出了一个看起来依旧合理的蛋白质结构,所以这个错误才没有被发现。之后,不知情的研究人员继续利用这一套软件分析之后的实验数据,导致了整起事件。
 
    在研究室中,市面上所贩卖的套装商业软件往往需要使用者额外增加一些指令以协助研究人员分析数据。但是很可能这些额外写出的程序会含有一些很不容易看出来的小BUG,然后运算的结果照样给你一个看起来合理的结果。如果不仔细确认所有的环节,就会造成上述的悲惨结果。
 
    由此可知,不论是实验或撰写程序,研究人员皆要小心为上,确认任何一个环节都是无懈可击。

对此我司现公布实验试剂导致产品检验质量有可能出现的一些问题:

ELISA质量保证是一个复杂的过程,许多重要的环节都影响到检测的质量:

一、方法学的影响

ELISA测定模式包括以下几种:双抗体夹心法、间接法、双抗原夹心法、IgM抗体捕捉法、竞争抑制法,其中竞争抑制法(HBeAb,HBcAb等采用)因受操作时差所引起的不公平竞争等因素的影响,结果重复性较差,质量较难控制。

二、试剂因素

不 同批次的ELISA试剂在制作过程中很难保证质量*一致,即使是通过批批检的项目其检测结果也存在差异,因此必须选择和订购长批号的试剂,并保证保存条 件。严格执行这一标准可以避免因试剂批号改变而重新建立质控体系及重新评估试剂的复杂过程,并且能够保证结果的稳定性;对于效期短、使用率低的试剂,应当 小量分装,每次使用则取分装部分即可,避免反复冻融造成试剂的失效。

1、避免直接接触终止液和底物A、B。一旦接触到这些液体,请尽快用水冲洗。

2、实验中不要吃喝、抽烟或使用化妆品。

3、不要用嘴吸取试剂盒里的任何成份。

三、样本因素

标本干扰因素包括内源性干扰因素和外源性干扰因素,前者包括类风湿因子、补体、异嗜性抗体、自身抗体、溶菌酶等,后者包括标本溶血、标本被细菌污染、标本贮存时间过长、标本凝固不全、冷冻标本的反复冻融等。

将 抗原或抗体固定在过程称为包被(coating)。换言之,包被即是抗原或抗体结合到固相载体表面的过程。蛋白质与聚苯乙烯固相载体是通过物理吸附结合 的,靠的是蛋白质分子结构上的疏水基团与固相载体表面的疏水基团间的作用于。这种物理吸附是非特异性的,受蛋白质的分子量、等电点、浓度等的影响。载体对 不同蛋白质的吸附能力是不相同的,大分子蛋白质较小分子蛋白质通常含有更多的疏水基团,故更易吸附到固相载体表面。IgG对聚苯乙烯等固相具有较强的吸附 力,其联结多发生在Fc段上,抗体结合点暴露于外,因此抗体的包被一般均采用直接吸附法。蛋白质抗原大多也可采用与抗体相似的方法包被。

不易吸附 在聚苯乙烯载体上的非蛋白质抗原可采用特殊的包被方式。例如,在检测抗DNA抗体时,需用DNA作为包被抗原,而普遍的固相载体一般不能直接与核酸结合。 可将聚苯乙烯板先经紫外线照射(例如30W紫外灯,75cm照射12小时),以增加其吸附性能。固相载体先用碱性蛋白质,如聚赖氨酸、鱼精蛋白等作预包 被,也可提高核酸的结合力。也可用亲和素生物素系统作间接包被,即用亲和素先包被载体,然后加入生物素化的DNA,这种包被方法均匀、牢固,已扩大应用于 各种抗原物质的定量测定。
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