细胞样本根据目的物所在部位可选择细胞裂解液或细胞培养上清作为样本。 需要注意的是: 因该类样本干扰因素较多, 如细胞状态、 细胞数量(大于 10^6)、ph(约为 7)、培养基盐离子浓度、采样时间等,所以可能存在检测不出的情况。
如果目的物是分泌型,主要在胞外,即可选择细胞培养上清作为样本,如果目的物主要存在于胞内,则建议选择细胞裂解液作为样本类型。细胞培养上清处理方法相对简单,取细胞培养上清,1000×g 离心 20 分钟,取上清即可检测。
细胞裂解液:
1)贴壁细胞需要先用胰酶消化,离心收集细胞(悬浮细胞可直接离心收集) ;
2)将收集到的细胞用冷PBS 洗3次;
3)物理方法裂解细胞(可先超声破碎细胞,再反复冻融) :
⇒ 超声破碎:取适量PBS 重悬细胞,用一定功率的超声波处理细胞悬液,使细胞急剧震荡破裂;
⇒ 反复冻融:将待破碎的细胞在-20 度以下冰冻,室温融解,反复3次,使细胞溶胀破碎;
4)将标本于2-8 度 1500×g 离心 10 分钟,收集上清备用。
处理样本的过程就是收集目标蛋白的过程,由于蛋白容易变性,降解,故该过程应尽量温和。样本处理之后的储存也非常重要,尤其注意不要反复冻融,样本处理之后可分装密封保存, 4 度保存应小于 1 周,-20 度不应超过 1 个月,-80度不应超过2个月。在标本使用前应缓慢均衡至室温,不应加热使之融解。样本的处理是实验成功的第yi步, ,以上就是关于常见样本处理方法的一个简述,供研究者参考。